生物膜反应器同步去除氨氮和铁锰的工艺特性研究
Received: 2016-12-26
0前言
生物预处理技术具有经济、高效去除地表水氨氮污染的优势, 多应用于城市给水厂以提升水质安全性, 保证出厂水水质达标
国内外生物法同步去除水中氨氮、铁锰的研究多采用单一菌液、混合菌液接种锰砂实现反应器快速启动, 或者利用成熟锰砂考察3种污染物在去除过程中的相互作用
然而, 接种针对铁锰去除的菌液, 往往需要相对复杂的处理过程, 通常需经历数以月计的预处理启动周期, 这对给水厂实际运行是一种挑战。此外, 现有研究中生物法同步去除3种污染物的微生物机理研究主要集中在对菌种类型的探讨
由于以氨氮为主要目标物的微污染水源水中铁锰含量普遍较低, 因此通过自然挂膜、非外源投加菌液的启动方式, 研究氨氮和铁锰同步去除将具有重要意义, 而目前相应的效能及机理研究较缺乏。因此, 本文采用无需反冲洗的悬浮填料, 通过生物预处理技术, 考察了实际地表水源水中3种污染物的同步去除及其微生物作用机理, 以期为生物预处理技术提升出水水质提供参考。
1 试验材料
1.1 试验装置及运行参数
试验采用流化载体生物膜工艺, 小试反应器为有机玻璃圆柱体 (高度550 mm, 内径55 mm) 。反应器底部为圆锥体, 有均匀布气孔及进水孔。上部有水样取口和生物样品取口。如图1所示, 反应器采用的填料为空心圆柱体, 材质为聚丙烯, 其规格为直径10mm, 长度10mm, 外周厚度0.6~0.8mm, 具齿, 比表面积≥600m2/g。同步去除试验的反应器进水条件如表1所示。
1.2 试验用水及分析方法
1.2.1 原水水质及运行条件
原水取自珠江水系北江段某水厂水源, 试验开展在8~10月, 是该流域的丰水期, 试验用水外源添加氯化铵和乙酸钠分别用以调节进水NH3-N和CODMn浓度。试验期间水质基本参数的平均值如下:水温为26.9℃, pH为7.7, 浊度为52.1NTU, UV254为0.03cm-1。原水中铁锰离子的浓度范围分别为ρ (Fe) 0.01~0.83 mg/L和ρ (Mn) 0.002~0.1 mg/L。根据全年原水水质监测结果可知, 2~6月锰离子存在超标的情况, 超标的锰离子平均浓度为0.17mg/L。反应器内的HRT由蠕动泵控制, 同步去除试验中R4~R6的HRT分别为20min、40min和60min, 其他反应器的HRT均为72min;气水比由空气泵和气体流量计调控。
1.2.2 分析方法
定期检测反应器内进出水NH3-N、NO2--N、NO3--N的质量浓度, 经过0.45μm滤膜过滤的水样, 其中NH3-N浓度采用纳氏试剂分光光度法, NO2--N浓度采用N- (1-萘基) -乙二胺分光光度法, NO3--N浓度采用紫外分光光度法进行测定。利用ICP-AES测定铁离子和锰离子的浓度
1.3 细菌群落分析方法
1.3.1 扫描电镜能谱分析
扫描电镜生物样品预处理的方法为4℃戊二醛溶液 (2.5%, pH 7.2) 中固定1.5h, PBS溶液冲洗3次, 每次10min, 经过50%、70%、90%、100%、100%、100%的乙醇梯度脱水, 每次10min, 再利用等比例的100%乙醇、叔丁醇和纯叔丁醇各置换一次, 每次15 min, 样品经过冷冻干燥、喷金后, 通过扫描电镜 (Quanta 200FFESEM) 观察样品。
1.3.2 DNA提取、PCR扩增和DGGE谱图分析
微生物分析的样品于反应器顶端采集。采用DNA提取试剂盒提取总DNA, 提取方法参见试剂盒产品说明书 (MOBIO, 美国) 。PCR扩增采用细菌16SrRNA基因的V3区保守序列通用引物343F (5’-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3’) 和534R (5’-ATTACCGCGGCTGCTGG-3’) , 正向引物的5′端引入一段GC夹 (5′-CGCCCGCCGCGCGCG-GCGGGCGGGGCGGGGG CCCGGGGG-3′) 。PCR反应体系 (50μL) 组分为Taq酶 (5 U/μL) 0.25μL, 10×PCR Buffer (Mg2+Plus) 5μL, dNTP Mixture (各2.5 mmol/L) 4μL, 模版DNA 2.5ng, 正向引物 (20μmol) 1μL, 反向引物 (20μmol) 1μL, 用灭菌蒸馏水补充至50μL。PCR的反应程序为:94℃预热10 min, 94℃变性1min, 55℃退火30s, 72℃延伸1.5min, 以上条件30个循环后, 72℃延伸10min, 4℃恒温, 取出扩增样品保存于-20℃。经过DGGE分析后获取条带、ABI测序平台测序、NCBI数据库Blastn功能对比分析后, 鉴定菌种类型。
2 结果与讨论
2.1 气水比条件的选定
气水比即曝气量与进水流量的比值, 直接影响反应器内的溶解氧浓度。适宜的气水比有利于硝化反应的进行, 反之过大的气水比将加速对生物膜的冲刷, 不利于细菌对目标污染物的去除。因此, 选定适宜的气水比是稳定运行生物膜反应器的基础。在同步去除试验之前, 根据进水水质及反应器功能, 调节了反应器不同阶段的气水比大小分别为0.5、1.0和2.0, 如图2所示, 伴随气水比的升高, NH3-N的去除率逐渐趋于稳定, 3个阶段的平均去除率分别为79.25%、90.95%和95.81%。按照原水最高进水NH3-N浓度2.76mg/L计算, 气水比为0.5时出水NH3-N不达标 (>0.5 mg/L) , 而气水比为1.0和2.0时, 出水NH3-N浓度分别为0.25mg/L和0.12mg/L。为同时保证反应器高效硝化能力和低能耗的实际需求, 后续的同步去除试验选定的气水比为1.0。
2.2 不同进水条件对同步去除的影响
2.2.1 不同进水NH3-N浓度对同步去除的影响
悬浮填料生物膜反应器R1~R3的平均进水NH3-N浓度分别为1.01 mg/L、1.87 mg/L和2.76mg/L。如图3a所示, 3个反应器在运行16d后硝化作用逐步趋于平稳, 经过37d的相对稳定运行, NH3-N的平均去除率分别为85.25%、93.95%和95.37%, 进水NH3-N浓度与其去除率呈现正相关, 经过生物预处理单元处理后的平均氨氮浓度分别为0.14mg/L、0.11mg/L和0.13mg/L, 均满足《生活饮用水卫生标准》 (GB 5749-2006) 限值。反应器对铁锰离子也有一定程度的去除, 如图3b和3c所示, R1~R3对铁离子的平均去除率分别为32.68%、40.66%和40.99%, 其与NH3-N的去除规律相类似, 最高可使0.50mg/L进水铁离子出水达标;而对于锰离子的平均去除率则分别为39.37%、39.52%和30.11%, 进水NH3-N浓度的提高反而降低了对锰离子的去除效果, 针对锰离子潜在的超标浓度 (0.17mg/L) , R1和R2均可保证其出水浓度达标。
2.2.2 不同HRT对同步去除的影响
反应器R4~R6的水力停留时间 (HRT) 分别为20min、40 min和60 min。如图4a所示, 延长HRT提升了NH3-N的去除效果, 其平均去除率分别为85.24%、89.83%和95.89%, 该数值与HRT值呈现正相关, 并且出水NH3-N浓度均达标。同时, 如图4b和4c所示, R4~R6对铁离子的平均去除率分别为20.16%、32.14%和40.77%, 在不同HRT的影响下其去除效果仍与NH3-N具有相似的变化规律, 最高可使0.50mg/L进水铁离子出水达标;对于锰离子的平均去除率则分别为25.59%、42.19%和40.65%。同样地, 当NH3-N的去除效果最优时, 锰离子的去除效能则有所降低, 其中R5和R6均可保证潜在超标的锰离子 (0.17mg/L) 出水达标。
由上述试验结果可知, 延长HRT有利于NH3-N和Fe的去除, 然而为控制成本水厂在实际运行过程中需合理地缩短HRT。反应器R4平均出水NH3-N为0.29mg/L, 可保证0.38mg/L的铁离子浓度出水达标, 可将0.17 mg/L锰离子降低为0.13mg/L;而R5平均出水NH3-N为0.20mg/L, 可保证0.44 mg/L的铁离子浓度出水达标, 可将0.17mg/L锰离子降低为0.09mg/L;R6平均出水NH3-N则为0.08mg/L, 可保证0.51mg/L的铁离子浓度出水达标, 可将0.17mg/L锰离子降低为0.10mg/L。综合考察3种污染物的去除效果及缩短HRT的实际需求, R5的运行参数为最优。
2.2.3 不同进水CODMn浓度对同步去除的影响
反应器R7~R9的进水CODMn浓度分别为1.69mg/L、2.04mg/L和2.57mg/L。如图5a所示, 伴随有机物浓度的升高, 其硝化能力先升高后降低, NH3-N的平均去除率分别为92.21%、96.31%和89.75%。如图5b和5c所示, R7~R9对铁离子的平均去除率分别为35.50%、48.49%和45.33%, 反应器对铁离子的去除始终与对NH3-N的去除具有相一致的变化规律, 最高可使0.58mg/L进水铁离子出水达标;而对于锰离子的平均去除率则分别为44.64%、55.49%和68.43%, 当NH3-N去除率下降时, 锰离子的去除效果反而有所提升, R7~R9均可以保证潜在超标的锰离子 (0.17mg/L) 出水达标。
图3~图5表明可实现对氨氮、铁、锰的同步去除。首先, 不同的进水条件下氨氮去除效果均良好, 平均去除率均大于85%, 其中氨氮负荷为1.72mg/L, CODMn浓度为2.04mg/L, HRT为72min时, NH3-N的去除效果最好, 启动平稳期的平均去除率为96.31%, 同时其NO2--N的平均去除率为77.47%、NO3--N的平均出水浓度为3.56mg/L。反应器R1~R9对铁离子的去除率为20.16%~48.49%, 对锰离子的去除率为25.59%~68.43%, 这说明生物膜对铁锰的氧化能力普遍低于其硝化能力。其中, Fe与NH3-N的去除规律变化一致, 而Mn与NH3-N的去除规律变化相反。然而, 在水厂实际运行时宜采用R5的进水条件, 当HRT为40min时, 仍可保证出水NH3-N达标, 其NO2--N的平均去除率为78.53%、NO3--N的平均出水浓度为3.70mg/L。研究表明, 溶解氧是氨氮、铁锰同步去除最主要的限制因素
综合上述试验结果可知, 当原水中CODMn平均浓度为2.0 mg/L、NH3-N负荷小于3.4 mg/L时, HRT为20min即可保证出水NH3-N达标;当原水中CODMn浓度为2.0~2.5 mg/L、NH3-N负荷为3.4~4.9 mg/L时, HRT为40 min即可保证出水NH3-N达标;当原水水质污染程度加深, 则需要适当地延长HRT。同时, 铁锰离子的去除效果与其进水浓度呈正相关, 反应器最高可使0.6mg/L进水铁离子和0.3mg/L进水锰离子出水达标。
2.3 生物膜同步去除的作用机理
2.3.1 生物膜对铁锰去除的贡献
不同进水条件对于氨氮、铁锰的同步去除产生了影响, 然而差异不大, 从本试验选用反应器R1为例, 研究生物膜同步去除3种污染物的机理。由上述试验结果可知, 在反应器内主要进行的是硝化过程, 可以推断硝化细菌在生物膜上为优势菌种
R1出水铁、锰离子浓度与其进水浓度呈线性相关:CFe出=0.775 2CFe进-0.015 2 (R2=0.979 6) 、CMn出=0.689 8CMn进-0.000 5 (R2=0.992 6) , 去除能力较为稳定。其他反应器锰离子进出水浓度基本都呈线性相关 (R9除外) , 然而部分反应器铁离子的进出水浓度仅呈正相关 (R5~R9) 。结果表明反应器生物除锰能力较于生物除铁能力更加稳定。研究表明, 微生物形成的除锰活性膜将其氧化为MnO2·mH2O, 经沉淀后得到去除, 而在DO相对充足的情况下, 铁的去除则有物理吸附、化学氧化和生物氧化多种去除途径
2.3.2 生物膜铁锰离子的吸附作用
生物膜主要是由胞外聚合物 (EPS) 和各类功能菌组成的三维立体结构, 其中EPS的主要成分是胞外多糖和胞外蛋白, 这使得生物膜具有网孔和粘性, 使其有利于吸附目标污染物
2.3.3 功能菌协同作用完成同步去除
反应器R1悬浮填料表面生物膜上的菌种鉴定结果如表2所示。亚硝化单胞菌属Nitrosomonas nitrosa和硝化螺菌属Candidatus Nitrospira负责生物膜上的硝化作用
3 结论
(1) 当原水中CODMn平均浓度为2.0 mg/L、NH3-N负荷小于3.4 mg/L时, HRT为20 min即可保证出水NH3-N达标;当原水中CODMn浓度为2.0~2.5mg/L、NH3-N负荷为3.4~4.9mg/L时, HRT为40 min即可保证出水NH3-N达标;当原水水质污染程度加大, 则需要适当延长HRT。
(2) 铁锰离子的去除效果与其进水浓度呈正相关, 反应器最高可使0.6 mg/L进水铁离子和0.3mg/L进水锰离子出水达标, 反应器R1~R9对铁离子的去除率为20.16%~48.49%, 对锰离子的去除率为25.59%~68.43%, 生物膜对铁锰的氧化能力普遍低于其硝化能力。
(3) 生物膜作为反应媒介先吸附铁锰离子, 进而为铁锰氧化菌提供生长所需的底物。
(4) 氨氧化细菌 (AOB) 、铁氧化细菌 (FeOB) 和锰氧化细菌 (MnOB) 共存于生物膜上, 协同完成3种污染物的同步去除。
[2]孙士权, 王旭东, 马军, 等.高锰酸盐-聚丙烯酰胺联用强化混凝处理太湖支流原水研究.给水排水, 2008, 34 (5) :26~29
[3] Takeda A.Manganese action in brain function.Brain Research Reviews, 2003, 41 (1) :79~87
[4] Tekerlekopoulou A G, Vayenas D V.Simultaneous biological removal of ammonia, iron and manganese from potable water using a trickling filter.Biochemical Engineering, 2008, 39 (1) :215~220
[5] Stembal T, Markic M, Ribicic N, et al.Removal of ammonia, iron and manganese from ground waters of northern Croatia-pilot plant studies.Process Biochemistry, 2005, 40 (1) :327~335
[6] Cai Y A, Li D, Liang Y W, et al.Effective startup biofiltration method for Fe, Mn, and ammonia removal and bacterial community analysis.Bioresource Technology, 2015, 176:149~155
[7] Hasan H A, Abdullah S R S, Kamarudin S K, et al.On-off control of aeration time in the simultaneous removal of ammonia and manganese using a biological aerated filter system.Process Safety and Environmental Protection, 2013, 91:415~422
[8]唐玉兰, 武卫斌, 赵玉华, 等.铁锰菌和硝化菌同步去除铁、锰和氨氮的研究.中国给水排水, 2013, 29 (5) :60~68
[9]汪洋, 黄廷林, 文刚.地下水中氨氮、铁、锰的同步去除及其相互作用.中国给水排水, 2014, 30 (19) :32~39
[10] Katsoyiannis I A, Zouboulis A I.Biological treatment of Mn (Ⅱ) and Fe (Ⅱ) containing groundwater:kinetic considerations and product characterization.Water Research, 2004, 38 (7) :1922~1932
[11] Mouchet P.From conventional to biological removal of iron and manganese in France.Journal-American Water Works Association, 1992, 84 (4) :158~167
[12] Hope C K, Bott T R.Laboratory modelling of manganese biofiltration using biofilms of Leptothrix discophora.Water Research, 2004, 38 (7) :1853~1861
[13]国家环保总局.水和废水监测分析方法.第4版.北京:中国环境科学出版社, 2002.370~372
[14] He J J, Tang Y L, Fu J X.Factors analysis for simultaneous biological removal of iron, manganese and ammonia from the micro-contaminants groundwater International Conference on Energy and Environment Technology.USA:IEEE Computer Society, 2009, 2:569~573
[15] Oehmen A, Viegas R, Velizarov S, et al.Removal of heavy metals from drinking water supplies through the ion exchange membrane bioreactor.Desalination, 2006, 199 (1~3) :405~407
[16] Vaaramaa K, Lehto J.Removal of metals and anions from drinking water by ion exchange.Desalination, 2003, 155 (2) :157~170
[17] Van Benschoten J E, Lin W, Knocke W R.Kinetic modeling of manganese (Ⅱ) oxidation by chlorine dioxide and potassium permanganate.Environmental Science and Technology, 1992, 26 (7) :1327~1333
[18] Kim J, Jung S.Soluble manganese removal by porous media filtration.Bioresource Technology, 2008, 29 (12) :1265~1273
[19] Schramm A, Beer D, Wagner M, et al.Identification and activities in situ of Nitrosospira and Nitrospira spp.as dominant populations in a nitrifying fluidized bed reactor.Applied and Environmental Microbiology, 1998, 64:3480~3485
[20] Villalobos M, Toner B, Bargar J, et al.Characterization of the manganese oxide produced by Pseudomonas putida strain strain MnB1.Geochimica et Cosmochimica Acta, 2003, 67:2649~2662
[21] Weber K A, Achenbach L A, Coates J D.Microorganisms pumping iron:anaerobic microbial iron oxidation and reduction.Nature Reviews Microbiology, 2006, 4:752~764
[22] Das A P, Sukla L B, Pradhan N, et al.Manganese biomining:a review.Bioresource Technology, 2011, 102:7381~7387